溶液和試劑

反應(yīng)緩沖液：1mM CaCl₂，0.2% Triton X-100或NP-40，50mM Tris-HCl（pH 7.6）

RIPA緩沖液：0.1% SDS，0.1% NaDOC，1% Triton X-100，1mM EDTA，10mM Tris-HCl（pH 7.6）

LiCl緩沖液：0.25M LiCl，0.5% NP-40，0.5% NaDOC，10mM Tris-HCl（pH 7.6）

TE緩沖液：1mM EDTA，10mM Tris-HCl（pH 7.6）

樣品制備

交聯(lián)和裂解-轉(zhuǎn)錄因子和輔助因子

細胞在10厘米培養(yǎng)皿中以20毫升培養(yǎng)基進行培養(yǎng)。當細胞密度達到80%至90%時，可用于進行ChIP實驗。細胞數(shù)量的選擇取決于您研究的目標蛋白質(zhì)。您可以參考以下表格：

為了確保更好的結(jié)果，我們建議使用超過4×10⁶個細胞進行組蛋白和RNA聚合酶II的ChIP實驗，而轉(zhuǎn)錄因子或輔助因子則需要更多的細胞。

1. 取出培養(yǎng)皿并倒掉培養(yǎng)基。細胞數(shù)量約為2×10⁷個。

2. 用冰冷的PBS洗滌細胞3次。

3. 添加1ml PBS，通過刮取的方式收集細胞。

4. 以2500轉(zhuǎn)/分鐘的速度，在4℃下離心3分鐘，收集細胞。

5. 通過向細胞中加入500μl反應(yīng)緩沖液（加入新鮮的蛋白酶抑制劑）來重新懸浮細胞，將其在冰上裂解10分鐘。

6. 以2500轉(zhuǎn)/分鐘的速度，在4℃下離心3分鐘，收集細胞。

7. 通過添加1ml反應(yīng)緩沖液和微量核酸酶，在37℃下反應(yīng)20分鐘。酶解條件應(yīng)參考微量核酸酶的說明書。處理時間和微量核酸酶的濃度應(yīng)通過初步實驗進行優(yōu)化。

8. 可以添加5mM EDTA來停止酶解反應(yīng)。

9. 使用超聲波打斷DNA，完全破碎。進行6次5秒的超聲處理。

10. 以2500轉(zhuǎn)/分鐘的速度，在4℃下離心2分鐘。將上清液分離到一個新的管中。

11. 您可以取5μl上清液進行瓊脂糖凝膠分析，以驗證超聲處理的效果。

免疫沉淀反應(yīng)

1. 將包含來自1×10⁷細胞的DNA的500μl細胞裂解液取出放入一個管中。

2. 在免疫沉淀之前，您需要設(shè)計四組實驗：

• 實驗組：將2-5μg特異性抗體加入500μl細胞裂解液中，并將管子放置在4℃旋轉(zhuǎn)混合器中過夜，形成抗原-抗體復(fù)合物。
• 輸入對照組：除了免疫沉淀反應(yīng)外，所有步驟與實驗組相同。
• 陰性對照組：除了使用正常兔子IgG代替抗體外，所有步驟與實驗組相同。
• 陽性對照組：除了使用組蛋白H3或RNA聚合酶II抗體代替抗體外，所有步驟與實驗組相同。

3. 將50μl磁珠加入復(fù)合溶液中，在4℃下孵育2-4小時。

4. 將磁珠吸附在磁力架上，去除上清液。

洗掉珠子

1. 使用過濾吸頭對磁珠進行洗滌:

• 2×1ml RIPA緩沖液
• 2×1ml RIPA緩沖液 + 0.3M NaCl
• 2×1ml LiCl緩沖液
• 2×1ml TE緩沖液 + 0.2% Triton X-100
• 1×1ml TE緩沖液。在旋轉(zhuǎn)混合器上混合1分鐘。

依次使用上述緩沖液兩次洗滌磁珠。每次用吸頭抽吸3-8次，并在旋轉(zhuǎn)混合器上旋轉(zhuǎn)10分鐘。

2. 通過磁力架去除洗滌緩沖液并收集沉淀復(fù)合物。

3. 將沉淀復(fù)合物懸浮在100μl TE緩沖液中。添加3-5μl 10% SDS和5μl 20mg/ml蛋白酶K。在65℃下孵育過夜。

4. 第二天，短暫渦旋混合，并使用磁力架將上清液轉(zhuǎn)移到新的管中。

5. 用100μl TE緩沖液 + 0.5M NaCl洗滌磁珠。將其與步驟4中的上清液結(jié)合。

DNA純化

您可以根據(jù)說明書用試劑盒提取DNA。

發(fā)現(xiàn)

用于表觀遺傳學(xué)研究的ChIP抗體